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0.2~0.5L样品中加入50μL内标使用液(5.1d)。将固相萃取柱安装在固相萃取装置上, 依次加入4mL0.1%的氨水/甲醇溶液(5.2f)、4mL甲醇(5.2b)和4mL纯水(5.2i),在添加 溶剂过程中始终保持柱头湿润。固相萃取柱上部开头连接通用转接头,通过管路在负压下吸 收样品,流速控制在约1滴/秒。用4mL25mmol/L乙酸铵水溶液(5.2g)淋洗固相萃取柱。 此时17种全氟化合物被固定在固相萃取柱上,此前的样品和淋洗液都弃置。将固相萃取柱用 真空冷冻干燥机低温干燥后(也
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1.1/2MS培养基的配制:称量MS粉(2.165g/L)、蔗糖(1%),加入超纯水,用KOH调pH5.6-5.8,之后加入琼脂粉(培养皿竖直培养时为1%,平放培养时为0.6%)。 2.灭菌:将培养基、培养皿(报纸包裹)、1000μL吸头、100μL吸头(剪去尖端)、超纯水,121℃,灭菌20min。 3.倒培养基:打开超净台紫外灯,杀菌20min,待上述灭菌结束后的物品转移到超净台上(关闭紫外灯,打开照明灯,点酒精灯,打开风机,调到2挡),待培养基不烫手,将培养基倒入培养皿,每个培
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检查这段话是否有语病,啰嗦不专业。当4mg/mL的原儿茶醛溶液流经附着MRSA的金芯片表面时,观察到频率急剧增加,直至达到稳定信号强度。超纯水冲洗后,频率迅速下降至低于零基线(f值为1.7962Hz)(图3-2A),并未降至零基线。金芯片上的重量信号与频率趋势相同(weight为45.90ng/cm2)(图3-2B)。相反,未粘附细菌的金芯片在原儿茶醛溶液流过后频率和重量信号急剧变化,但冲洗后恢复至零基线。上述结果表明,频率和重量信号的变化可能是原儿茶醛与细菌相互作用的结果,而不是非特异性结合所
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